Применение буккального трансплантата (buccal mucosa) для пластики магистральных сосудов

 Цель исследования: разработка и обоснование возможности применения буккального трансплантата для пластики магистральных сосудов.

Материал и методы. Эксперимент проводили на 48  животных – 45 беспородных кроликах массой 5–7 кг и 3  карликовых свиньях породы минипиг массой 35–45 кг. У  всех животных из срединной лапаротомии моделировали  травму сосудистой стенки на примере инфраренального  отдела брюшной аорты с последующей пластикой сосуда  буккальным трансплантатом. Животных выводили из эксперимента в сроки до 270 сут.

Результаты. По данным инструментальных методов  исследования, не выявлено стенозов, деформаций или аневризматических расширений брюшной аорты.  Морфодинамика процессов, протекающих в буккальном  имплантате, характеризуется изменениями внутренней выстилки аутотрансплантата в виде перестройки и приобретения морфологических черт эндотелиальной выстилки сосуда, исчезновением черт многослойного неороговевающего эпителия, характерного для полости рта.

Выводы. Применение буккального трансплантата продемонстрировало высокую эффективность в качестве  материала для пластики магистральных артериальных  сосудов в сроки наблюдения до 270 сут. Использование  этого аутоматериала не ассоциировано с развитием ложных  аневризм зоны пластики сосуда.  

1. Rerkasem K., Rothwell P.M. Patches of different types for carotid patch angioplasty. Cochrane Database Syst. Rev. 2010;2010(3):CD000071. DOI: 10.1002/14651858.CD000071.pub3.

2. Carrabba M., Madeddu P. Current strategies for the manufacture of small size tissue engineering vascular grafts. Front. Bioeng. Biotechnol. 2018;6:41. DOI: 10.3389/fbioe.2018.00041.

3. Chen F., Miwa S., Bando T., Date H. Pulmonary arterioplasty for the remaining arterial stump of the donor and the arterial cuff of the donor graft in living-donor lobar lung transplantation. Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2012;42(5):e138–139. DOI: 10.1093/ejcts/ezs460.

4. De Martino A., Milano A.D., Bortolotti U. Use of pericardium for cardiac reconstruction procedures in acquired heart diseases – a comprehensive review. Thorac. Cardiovasc. Surg. 2019. DOI: 10.1055/s-0039-1697918.

5. Sarac T.P., Carnevale K., Smedira N., Tanquilut E., Augustinos P., Patel A. et al. In vivo and mechanical properties of peritoneum/fascia as a novel arterial substitute. J. Vasc. Surg. 2005;41(3):490–497. DOI: 10.1016/j.jvs.2004.11.033.

6. Fisher O., Meecham L., Buxton P., Legge J., Fairhead J., Rajagopalan S. et al. Long-term outcomes of bovine pericardial patch angioplasty for recurrent stenosis in vascular access: A UK single-centre experience. J. Vasc. Access. 2018;19(6):658–662. DOI: 10.1177/1129729818769795.

7. Mogaldea A., Theodoridis K., Goecke T., Tudorache I., Haverich A., Cebotari S. et al. Assessment of cytocompatibility and mechanical properties of detergent-decellularized ovine pericardial tissue. Int. J. Artif. Organs. 2019;42(11):628–635. DOI: 10.1177/0391398819850583.

8. Corno A.F., Smith P., Bezuska L., Mimic B. Is decellularized porcine small intestine sub-mucosa patch suitable for aortic arch repair? Front. Pediatr. 2018;6:149. DOI: 10.3389/fped.2018.00149.

9. Poncelet A.J., El Khoury G., De Kerchove L., Sluysmans T., Moniotte S., Momeni M. et al. Aortic valve repair in the paediatric population: Insights from a 38-year single-centre experience. Eur. J. Cardiothorac. Surg. 2017;51(1):43–49. DOI: 10.1093/ejcts/ezw259.

10. Badylak S., Geddes L., Geddes L., Obermiller J. Extracellular matrix for myocardial repair. Heart Surg. Forum. 2003;6(2):E20–26. DOI: 10.1532/hsf.917.